Journal Information
Vol. 51. Issue 3.
Pages 140-150 (March 2015)
Visits
65479
Vol. 51. Issue 3.
Pages 140-150 (March 2015)
Artículo especial
Full text access
Consenso español para la prevención y el tratamiento de la infección bronquial por Pseudomonas aeruginosa en el paciente con fibrosis quística
Spanish Consensus on the Prevention and Treatment of Pseudomonas aeruginosa Bronchial Infections in Cystic Fibrosis Patients
Visits
65479
Rafael Cantóna,b,
Corresponding author
rafael.canton@salud.madrid.org

Autor para correspondencia.
, Luis Máizc, Amparo Escribanod, Casilda Olveirae, Antonio Oliverb,f, Oscar Asensiog, Silvia Gartnerh, Eva Romai, Esther Quintana-Gallegoj, Antonio Salcedok, Rosa Girónl, María Isabel Barriom, María Dolores Pastorn, Concepción Pradoso, María Teresa Martínez-Martínezp, José Barberánq, Juan José Castónr, Luis Martínez-Martínezb,s, José Luis Povedai, Carlos Vázquezt..., Javier de Graciau, Amparo Solév,
Corresponding author
sole_amp@gva.es

Autor para correspondencia.
,
en representación del Grupo Español de Consenso del Tratamiento Antimicrobiano en el Paciente con Fibrosis Quística 1Ver más
a Servicio de Microbiología, Hospital Universitario Ramón y Cajal e Instituto Ramón y Cajal de Investigaciones Sanitarias (IRYCIS), Madrid, España
b Red Española de Investigación en Patología Infecciosa (REIPI), Instituto de Salud Carlos III, Madrid, España
c Unidad de Bronquiectasias y Fibrosis Quística, Servicio de Neumología, Hospital Universitario Ramón y Cajal e Instituto Ramón y Cajal de Investigaciones Sanitarias (IRYCIS), Madrid, España
d Unidad de Neumología Pediátrica y Fibrosis Quística, Servicio de Pediatría, Hospital Clínico Universitario, Universidad de Valencia, Valencia, España
e Unidad de Gestión Clínica de Enfermedades Respiratorias, Hospital Regional Universitario de Málaga, Instituto de Investigación Biomédica de Málaga (IBIMA), Universidad de Málaga, Málaga, España
f Servicio de Microbiología y Unidad de Investigación, Hospital Universitario Son Espases, Instituto de Investigación Sanitaria de Palma (IdISPa), Palma de Mallorca, España
g Unidad de Neumología y Alergia Pediátrica, Hospital Universitario de Sabadell. Corporació Sanitària Parc Taulí, Sabadell, Barcelona, España
h Unidad de Neumología Pediátrica y Fibrosis Quística, Hospital Universitario Vall d’Hebron, Barcelona, España
i Servicio de Farmacia, Hospital Universitario y Politécnico La Fe, Valencia, España
j Unidad de Fibrosis Quística, Servicio de Neumología, Hospital Universitario Virgen del Rocío, Sevilla, España
k Unidad de Fibrosis Quística Interhospitalaria Niño Jesús-Gregorio Marañón, Madrid, España
l Unidad de Bronquiectasias y Fibrosis Quística, Hospital Universitario La Princesa, Instituto La Princesa de Investigación Sanitaria, Madrid, España
m Sección de Neumología Pediátrica y Unidad de Fibrosis Quística, Hospital Universitario La Paz, Madrid, España
n Unidad de Neumología Pediátrica y Fibrosis Quística, Hospital Universitario Virgen de la Arrixaca, Murcia, España
o Unidad de Fibrosis Quística y Bronquiectasias, Servicio de Neumología, Hospital Universitario La Paz, Madrid, España
p Servicio de Neumología, Unidad de Fibrosis Quística, Hospital Universitario 12 de Octubre, Madrid,, España
q Departamento de Medicina Interna, Hospital Montepríncipe, Universidad CEU San Pablo, Madrid, España
r Unidad de Enfermedades Infecciosas, Hospital General Universitario de Ciudad Real, Ciudad Real, España
s Servicio de Microbiología, Hospital Universitario Marqués de Valdecilla-IDIVAL y Departamento de Biología Molecular, Universidad de Cantabria, Santander, España
t Unidad de Neumología Pediátrica y Fibrosis Quística, Hospital Universitario de Cruces, Baracaldo, Vizcaya, España
u Servicio de Neumología y CIBER en Enfermedades Respiratorias (CibeRES), Hospital Universitari Vall d’Hebron, Universidad Autónoma, Barcelona, España
v Unidad de Trasplante Pulmonar y Fibrosis Quística, Hospital Universitario y Politécnico la Fe, Valencia, España
Ver más
This item has received
Article information
Abstract
Full Text
Bibliography
Download PDF
Statistics
Tables (7)
Tabla 1. Grados de evidencia clínica20
Tabla 2. Criterios para definir las exacerbaciones en los pacientes con fibrosis quística36,38,39
Tabla 3. Patrones y criterios microbiológicos en la colonización-infección pulmonar por Pseudomonas aeruginosa en el paciente con fibrosis quística1,53,54
Tabla 4. Dosis recomendadas y vía de administración de los antibióticos utilizados en las exacerbaciones por Pseudomonas aeruginosa en fibrosis quística
Tabla 5. Tratamiento antimicrobiano en la infección bronquial por Pseudomonas aeruginosa en el paciente con fibrosis quística según su situación clínica (los antimicrobianos inhalados se recogen por orden cronológico de utilización en España y no suponen un orden de prioridad en la recomendación)
Tabla 6. Medidas de control epidemiológico en diferentes ámbitos en el paciente con fibrosis quística e infección bronquial por Pseudomonas aeruginosa
Tabla 7. Aspectos clave en las intervenciones de coste-efectividad en el tratamiento de la infección bronquial por Pseudomonas aeruginosa en fibrosis quística
Show moreShow less
Additional material (1)
Resumen

Pseudomonas aeruginosa es el patógeno más importante en la infección broncopulmonar en fibrosis quística (FQ). Solo se erradica en la infección inicial, mientras que la reducción de su carga bacteriana es el objetivo terapéutico en la infección crónica y exacerbaciones. El cribado neonatal y la farmacocinética/farmacodinámica han cambiado el manejo del paciente con FQ. Se debe realizar un seguimiento microbiológico en los pacientes sin infección por P.aeruginosa. En la infección inicial se recomienda tratamiento inhalado (28días) con colistina (0,5-2MU/8h), tobramicina (300mg/12h) o aztreonam (75mg/8h) con o sin ciprofloxacino oral (15-20mg/kg/12h, 2-3 semanas). En la infección crónica se recomienda solo vía inhalada en tratamiento continuo con colistina, o en ciclos on-off de 28días con tobramicina o aztreonam. Durante las exacerbaciones leves-moderadas se recomienda tratamiento oral (ciprofloxacino, 2-3 semanas) y en las graves tratamiento intravenoso (β-lactámico asociado a un aminoglicósido o una fluoroquinolona). Estudios futuros sustentarán la rotación y nuevas combinaciones de antimicrobianos. Se deben establecer también medidas epidemiológicas que eviten nuevas infecciones y la transmisión cruzada de P.aeruginosa.

Palabras clave:
Fibrosis quística
Pseudomonas aeruginosa
Infección bronquial
Tratamiento antibiótico
Abstract

Pseudomonas aeruginosa is the main pathogen in bronchopulmonary infections in cystic fibrosis (CF) patients. It can only be eradicated at early infection stages while reduction of its bacterial load is the therapeutic goal during chronic infection or exacerbations. Neonatal screening and pharmacokinetic/pharmacodynamic knowledge has modified the management of CF-patients. A culture based microbiological follow-up should be performed in patients with no infection with P.aeruginosa. At initial infection, inhaled colistin (0,5-2MU/tid), tobramycin (300mg/bid) or aztreonam (75mg/tid) with or without oral ciprofloxacin (15-20mg/kg/bid, 2-3weeks) are recommended. In chronic infections, treatment is based on continuous administration of colistin or with a 28-day on-off regimen with tobramycin or aztreonam. During mild-moderate exacerbations oral ciprofloxacin (2-3weeks) can be administered while serious exacerbations must be treated with intravenous combination therapy (beta-lactam with an aminoglycoside or a fluoroquinolone). Future studies will support antibiotic rotation and/or new combination therapies. Epidemiological measures are also recommended to avoid new P.aeruginosa infections and “patient-to-patient transmission” of this pathogen.

Keywords:
Cystic fibrosis
Pseudomonas aeruginosa
Bronchial infection
Antibiotic treatment
Full Text
Introducción

La infección bronquial por Pseudomonas aeruginosa marca el manejo y la evolución del paciente con fibrosis quística (FQ). En 2005, el Grupo Español de Consenso del Tratamiento Antimicrobiano en el Paciente con Fibrosis Quística publicó un documento sobre el tratamiento antimicrobiano de la infección pulmonar por P.aeruginosa en estos pacientes1 que fue pionero al considerar los aspectos farmacocinéticos (PK) y farmacodinámicos (PD) del tratamiento y la dinámica de la infección bacteriana en la FQ. La publicación de otras recomendaciones2-6, el cribado neonatal7, la autorización de nuevos antibióticos en FQ8,9 y el avance del conocimiento10-19 hacen necesaria su actualización. Las recomendaciones se han establecido en grados de evidencia20 a partir de estudios incluidos en PubMed y ponderado según la experiencia clínica (tabla 1).

Tabla 1.

Grados de evidencia clínica20

Calidad de la evidenciaFuerza de la recomendacióna
Grado  Definición  Categoría  Definición 
Evidencia de al menos un ensayo clínico controlado y aleatorizado  Evidencia buena para recomendar su uso 
II  Evidencia de al menos un ensayo clínico controlado y no aleatorizado o estudios de cohortes o de casos y controles, preferiblemente de más de un centro  Evidencia moderada para recomendar su uso 
III  Recomendación de expertos, basada en experiencia clínica o descripción de casos  Evidencia pobre para recomendar su uso 
    Evidencia moderada para desaconsejar su uso 
a

Se pondera según la experiencia clínica.

Evaluación clínica

La detección precoz de P.aeruginosa se logra mediante la realización de cultivos microbiológicos frecuentes de las secreciones respiratorias21-24 sobre todo en niños diagnosticados por cribado neonatal, habitualmente asintomáticos (III-A). También podría ser útil la monitorización de anticuerpos frente a P.aeruginosa (III-B)25,26, la polymerase chain reaction (III-B)27 y el estudio de compuestos volátiles (III-C)28 en el esputo.

La prevalencia de la infección por P.aeruginosa aumenta con la edad y llega al 80% en >18años29-36. La persistencia de recuentos elevados y el cambio del morfotipo no-mucoide a mucoide se relacionan con más exacerbaciones, peor función pulmonar y mortalidad29,32,36. La exacerbación (tabla 2) se caracteriza por un cambio en la sintomatología y la aparición de nuevos síntomas35,37,38.

Tabla 2.

Criterios para definir las exacerbaciones en los pacientes con fibrosis quística36,38,39

Síntomas y signos  Criterios radiológicos, funcionales y/o analíticos 
• Cambios en la intensidad y/o características de la tos• Cambio en las características del esputo (aumento del volumen, purulencia y/o consistencia)• Aumento o aparición de disnea y/o disminución de tolerancia al ejercicio• Anorexia, astenia y/o pérdida de peso• Dolor torácico• Fiebre ≥38°C en más de una ocasión en la semana previa• Aumento de la frecuencia respiratoria• Modificaciones en la auscultación pulmonar• Hemoptisis u otras complicaciones  • Disminución del FEV110%, respecto a valores basales de los últimos 3 meses• Disminución de la saturación de O210%, respecto a valores basales de los últimos 3 meses• Aumento de marcadores de inflamación (VSG, proteína C reactiva…)• Aumento del atrapamiento aéreo o aparición de nuevos infiltrados radiológicos• Cambios en la densidad bacteriana de la flora colonizadora o adquisición de un nuevo microorganismo• Modificación o aumento de anticuerpos frente a P. aeruginosa 

En los pacientes con primoinfección por P.aeruginosa la función pulmonar puede ser normal. Inicialmente se alteran los marcadores de hiperinsuflación, como el volumen residual (VR), el VR/capacidad pulmonar total y los flujos mesoespiratorios. El índice de aclaramiento pulmonar, obtenido mediante una técnica de lavado por múltiples respiraciones de un gas inerte, detecta alteraciones mínimas y es más alto en pacientes infectados por P.aeruginosa. Su normalidad tiene un elevado valor predictivo negativo (93%) para excluir la infección por este patógeno (III-B)33,39-41.

La disminución del volumen espiratorio forzado en el primer segundo (FEV1) refleja progresión de la infección y tiene buena correlación con la gravedad de las exacerbaciones (III-A)42. La tomografía computarizada de tórax detecta precozmente el deterioro de la vía aérea y es útil para estimar la gravedad (III-A)43-46. La infección pulmonar se asocia con una progresión del atrapamiento aéreo y un mayor daño estructural, incluyendo las bronquiectasias47. Las puntuaciones obtenidas son peores en la infección por P.aeruginosa29,48,49 y durante las exacerbaciones50.

Patrones de infección y evaluación microbiológica

Se diferencian 3 fases en la infección respiratoria en FQ1:

  • -

    Infección inicial (primoinfección). Se produce un primer cultivo positivo de P.aeruginosa. Suelen ser cepas no mucosas, sensibles a los antimicrobianos. Los cultivos negativos después del primer cultivo pueden indicar una infección inicial abortada o críptica o la erradicación de P.aeruginosa tras el tratamiento antimicrobiano. Se considera erradicación cuando se obtienen, al menos, 2 cultivos negativos para P.aeruginosa realizados a partir de 1-2semanas tras finalizar el tratamiento y, al menos, separados 2-4semanas entre sí51.

  • -

    Infección intermitente. Se obtienen resultados intermitentemente positivos y negativos en cultivos consecutivos después de una infección inicial. Puede reflejar una infección permanente con bajos niveles cuantitativos, heterogeneidad en la procedencia de las muestras, o erradicación aparentemente transitoria, pero con colonización persistente de los senos paranasales que provoca reinfecciones intermitentes3,52. Los aislados tienen diferentes morfotipos, incluyendo el mucoso.

  • -

    Infección crónica. Es habitual en la enfermedad avanzada. Aparecen colonias mucosas con diversidad de morfotipos, por la especialización y evolución adaptativa de P.aeruginosa a las condiciones del medio endobronquial. Las exacerbaciones, de causas mal conocidas, suelen coincidir con aumento de la carga bacteriana o variaciones antigénicas.

La tabla 3 incluye los patrones de infección definidos en 20051, modificados según los criterios de Leeds y correlación con los parámetros clínicos (II-A)53,54.

Tabla 3.

Patrones y criterios microbiológicos en la colonización-infección pulmonar por Pseudomonas aeruginosa en el paciente con fibrosis quística1,53,54

Estadios  Definición  Criterio microbiológico  Comentarios 
I. Infección inicial (primoinfección o infección pionera)  Detección del primer cultivo positivo de P. aeruginosa en el árbol bronquial. No suelen aparecen manifestaciones clínicas, aunque puede existir respuesta inflamatoria  Primer cultivo positivo de P. aeruginosa  Un cultivo positivo después de un año de negatividad después de finalizar el tratamiento se considera como una nueva primoinfecciónSuelen ser cepas con colonias no mucosas, con escasa diversidad de morfotipos y sensibles a los antimicrobianosNo suele aparecer respuesta inmunológica específica frente a P. aeruginosa 
II. Infección intermitente  Presencia de cultivos intermitentes positivos y negativos para P. aeruginosa en muestras consecutivas tras la infección inicial. Pueden no existir manifestaciones clínicas y suele existir respuesta inflamatoria  50% de cultivos positivos para P. aeruginosa en los 12 meses previos  Pueden aparecer cepas con colonias mucosas y otros morfotipos colonialesPuede aparecer respuesta inmunológica específica frente a P. aeruginos
III. Infección crónica  Cultivos positivos persistentes de P. aeruginosa sin signos clínicos nuevos de infección y con respuesta inflamatoria  >50% de cultivos positivos para P. aeruginosa en los 12 meses previos  Suele producirse por cepas con colonias mucosas y otros morfotipos colonialesEs el patrón habitual en periodos avanzados de la enfermedadExiste respuesta inmunológica consistente con la presencia de P. aeruginosa 
IV. Exacerbación  Aparición o aumento de síntomas respiratorios durante el curso de la infección crónica  Cultivo positivo para P. aeruginosa  Posible aumento del recuento bacterianoEn pacientes sin estudio microbiológico puede utilizarse como criterio diagnóstico el aumento de anticuerpos en 2 muestras de sangre sucesivas 
Fundamentos y estrategias del tratamiento antimicrobiano

El tratamiento frente a P.aeruginosa es la piedra angular para controlar la progresión de la enfermedad respiratoria. La erradicación de P.aeruginosa se consigue en pocas ocasiones una vez establecida la infección crónica, por lo que lo más eficaz es tratarla precozmente (I-A). El particular nicho en el que se sitúa P.aeruginosa, su tendencia a formar biopelículas y las dificultades de algunos antimicrobianos para alcanzar concentraciones eficaces en la mucosa respiratoria con la administración oral o intravenosa han favorecido que el tratamiento de elección en la infección crónica sea la vía inhalada9,18,55-58. Además puede evitar el desarrollo de resistencias, aunque debe vigilarse la emergencia de bacterias oportunistas diferentes de P.aeruginosa.

Se recomienda utilizar por vía inhalada las preparaciones galénicas específicas para esta vía, ya que es menor el riesgo de efectos adversos locales (principalmente broncoespasmo) (III-A).

Por otra parte, la farmacocinética en sangre de los antimicrobianos en FQ difiere de la de los individuos sin esta enfermedad17,61-63; por ello las dosis utilizadas en caso de emplear la vía sistémica (por ejemplo, en las exacerbaciones) son distintas de las empleadas en los pacientes sin FQ (tabla 4) y repercuten en los valores de los índices PK/PD de los antimicrobianos58-60,64-72.

Tabla 4.

Dosis recomendadas y vía de administración de los antibióticos utilizados en las exacerbaciones por Pseudomonas aeruginosa en fibrosis quística

Grupo o familia de AntimicrobianoVía de administración  Pauta de administración en:
      Niños (< 50 kg)  Adultos (> 50 kg) 
Penicilinas  Piperacilina/tazobactam  i.v.  100 mg/kg/6 h  2-4a g/6-8 h 
Cefalosporinas  Ceftazidima  i.v.  50-70 mg/kg/8 h  2 g/8 h 
  Cefepima  i.v.  50 mg/kg/8 h  2 g/8 h 
Otros β-lactámicos  Aztreonam  i.v. o i.m.  50 mg/kg/8 h  1-2 g/6-8 h 
  Imipenem  i.v. o i.m.  15-25 mg/kg/6 h  1 g/6-8 h 
  Meropenem  i.v.  20-40 mg/kg/8 h  2 g/8 h 
  Doripenem  i.v.  No recomendado  0,5-1 g/8 hb 
Aminoglucósidos  Gentamicina  i.v. o i.m.  10-15 mg/kg/24 h  10-15 mg/kg/24 h 
  Tobramicina  i.v. o i.m.  5-10 mg/kg/24 h  5-10 mg/kg/24 h 
  Amikacina  i.v. o i.m.  30-35 mg/kg/24 h  30-35 mg/kg/24 h 
Quinolonas  Ciprofloxacino  Oral  15-20 mg/kg/12 h  0,75 g/12 h 
    i.v.  15-20 mg/kg/12 h  0,4 g/12 h 
  Levofloxacino  Oral  ND  0,5 g/12 h 
    i.v.    0,75 g/24 h 
Otros  Colistina  i.v.o i.m.  20.000 UI/Kg/8 h  2.000.000 UI/8 h 

i.v.: intravenoso; i.m.: intramuscular; ND: no definida.

a

Expresado como piperacilina.

b

Perfusión en 4h; i.v.

Profilaxis antimicrobiana y vacunación

No hay evidencias sobre la efectividad de administrar antibióticos antes del primer aislado de P.aeruginosa, ni de la vacunación frente a P.aeruginosa, por lo que no se recomiendan (I-A)73,74.

Tratamiento de la primoinfección

El tratamiento precoz de la primoinfección por P.aeruginosa retrasa la infección crónica (I-A). Debe iniciarse tan pronto se aísle, ya que consigue altas tasas de erradicación (63-100%)42,75-81. Los protocolos de erradicación son muy variados, sin que ninguno haya demostrado una clara superioridad (I-A)3,55,82. Los estudios publicados son difíciles de comparar por diferencias en el diseño, la definición de erradicación y los regímenes de antibióticos79. La mayoría de las primoinfecciones son asintomáticas; no obstante, si comienza como una exacerbación se recomienda la pauta establecida frente a la misma (III-A).

El colistimetato de sodio fue el primer antibiótico nebulizado que, utilizado 2 veces al día, junto a ciprofloxacino oral, durante un tiempo que varió entre 3semanas y 3meses83,84, logró una disminución significativa de la infección crónica. En España existen 2 preparados (GES®, Genéricos Españoles Laboratorio, y Promixin®, Praxis Pharmaceutical).

La tobramicina para inhalación (300mg/5ml/12h) (TNS, TOBI®, Novartis) también es eficaz y segura para erradicar P.aeruginosa, incluso en niños de 6meses a 6años78,80,85,86. En el estudio ELITE80 se comparó la eficacia y la seguridad de TNS (300mg/5ml), durante 28 y 56días, ante el primer aislado de P.aeruginosa, siendo similares ambas estrategias. Más del 90% de los pacientes negativizó P.aeruginosa al mes del tratamiento, y la mayoría (69%) continuó sin infección a los 27meses. Este y otros trabajos orientarían a un tratamiento nebulizado erradicador de corta duración (1-3meses) (II-A)79,84-86.

En el estudio EPIC85, los pacientes (1-12años de edad) se aleatorizaron en distintas pautas durante 18meses: terapia cíclica, cada 3meses, con TNS combinada con ciprofloxacino oral o con placebo, y terapia con TNS combinada con ciprofloxacino oral o con placebo, solo cuando se aislaba P.aeruginosa en los cultivos de esputo realizados cada 3meses. TNS (300mg/5ml) se pautó en ciclos de 28días, seguidos de 28días de descanso (on-off) durante 18meses del estudio, y ciprofloxacino o el placebo durante 14días. No hubo diferencias significativas entre grupos, por lo que la administración de ciprofloxacino oral no añadiría ventajas al tratamiento inhalado.

Taccetti et al., comparando TNS (300mg/5ml o 300mg/4ml) con colistina nebulizada (2MU/12h), ambas con ciprofloxacino oral durante 28días, encontraron una eficacia similar en la erradicación79.

Recientemente, el estudio ALPINE, con aztreonam lisina para inhalación (AZLI, Cayston®, Gilead), 75mg/8h durante 28días, como tratamiento de la primoinfección en pacientes de >3meses y menos de 18años, mostró que el 89,1% de los pacientes negativizó P.aeruginosa al final del tratamiento y el 75,2 y el 58,2% permanecieron sin P.aeruginosa a los 28días y a los 6meses, respectivamente, de su finalización87.

Por tanto, se aconseja iniciar el tratamiento con un antibiótico inhalado durante un mes con colistimetato de sodio (0,5-2MU, 2 o 3veces al día) (I-A), o 28días con TNS (300mg/12h) (I-A), o AZLI (75mg/8h) (II-A), en asociación o no con ciprofloxacino oral (15-20mg/kg/12h) (máximo 2g/día), durante 2-3semanas (tabla 5). La asociación de ciprofloxacino persigue aumentar la eficacia antimicrobiana fundamentado en observaciones microbiológicas89.

Tabla 5.

Tratamiento antimicrobiano en la infección bronquial por Pseudomonas aeruginosa en el paciente con fibrosis quística según su situación clínica (los antimicrobianos inhalados se recogen por orden cronológico de utilización en España y no suponen un orden de prioridad en la recomendación)

Situación clínica  TratamientoComentarios 
Primer cultivo positivo porP. aeruginosa(primoinfección)
• Sin clínica  Colistina inhalada 1 mes, 0,5-2 millones U, 2-3 veces día (I-A) ± Ciprofloxacino oral 15-20 mg/kg 2 veces día 2-3 semanasoTobramicina inhalada 28 días, 300mg, 2 veces día (I-A)oAztreonam inhalado 28 días, 75mg, 3 veces día (II-A)aRealizar cultivo 1-2 semanas después de finalizar el tratamiento:- Si es negativo: prolongar la misma pauta de tratamiento continuo con colistina (máximo 3-6 meses) o con 1-3 ciclos on-off con tobramicina o aztreonam (máximo 6 meses) (II-A)- Si es positivo: repetir la misma pauta de tratamiento o cambiar por otra combinación (ciprofloxacino + un antibiótico inhalado no utilizado en el primer ciclo) (III-A). Realizar un nuevo cultivo 1-2 semanas después de finalizar el tratamiento y, si continúa siendo positivo, aplicar el protocolo de la infección crónica (I-A)Los protocolos de erradicación ensayados son muy variados, con pautas que incluyen antibióticos inhalados y orales. Si fracasan al menos 2 estrategias con esta pauta, se han propuesto antibióticos inhalados más i.v. simultáneamente (I-B)Diferenciar siempre entre la primoinfección en niños diagnosticados por cribado con poca lesión pulmonar y adultos o reciente reinfección por P. aeruginosaEn niños con primoinfección es posible que sea suficiente un tratamiento de menor duración (1-3 meses) 
• Con clínica  Seguir la recomendación de la infección crónica con exacerbación 
Infección crónica porP. aeruginosa
• Clínica estable  Colistina inhalada tratamiento continuo, 0,5-2 millones U, 2-3 veces día (III-A)b,coTobramicina inhalada en ciclos on-off cada 28 días, 300mg, 2 veces al día (I-A)Tobramicina inhalada polvo seco en ciclos on-off, 112mg, 2 veces al día (I-A)doAztreonam inhalado en ciclos on-off cada 28 días, 75mg, 3 veces al día (I-A)eMantener pauta inhalada mientras el beneficio/riesgo sea favorableEn afectación pulmonar moderada-grave o respuesta insuficiente en los ciclos on-off,- Emplear los antibióticos inhalados de manera continua, alternando/rotando sin periodos de descanso entre ellos o con intervalos off más cortos de 28 días (III-B)- Asociar un antibiótico oral o i.v.f con actividad antipseudomonas según sensibilidad, a demanda o en ciclos (cada 3-6 meses) (III-B) 
• Exacerbacióng  Exacerbación leve:  tratamiento con un antibiótico oral con actividad antipseudomonas, 2-3 semanasValorar mantener pauta inhalada si está pautada con anterioridad (III-C)Prolongar tratamiento IV si no hay mejoría o existe afectación grave (3-4 semanas) (III-A) 
  Exacerbación grave:  Ceftazidima i.v. 50-70 mg/kg/8 hoCefepima i.v. 50 mg/kg/8 h 2-3 semanas  + Tobramicina i.v. 5-10 mg/kg/24 hoAmikacina i.v. 30-35 mg/kg/24 h 2-3 semanas  En ausencia de respuesta al tratamiento o en multirresistencia, adecuar el tratamiento combinado IV al perfil de sensibilidad con penicilinas antipseudomonas (piperacilina/tazobactam), monobactámicos (aztreonam) o un carbapenem (imipenem, meropenem o doripenem) en combinación con un aminoglucósido o con una fluoroquinolona 

i.v.: intravenoso.

a

En pacientes mayores de 3meses y menores de 18años.

b

El nivel de evidencia se ha establecido en función de los estudios publicados y no con la amplia experiencia de su utilización. Por ello, a pesar de que el nivel de evidencia es diferente a los nuevos fármacos, su nivel de recomendación es alto.

c

Tres veces al día en caso de evolución agresiva de la enfermedad.

d

Comercializado en España sin reembolso.

e

En pacientes con 6 o más años de edad.

f

Tratamiento como en la exacerbación.

g

Utilizar esta pauta en primoinfección con clínica de exacerbación.

Se debe realizar un cultivo de control 1-2semanas después de finalizar el tratamiento de erradicación52,88,90-92. Si es negativo, se debe prolongar el tratamiento de uno (28días) a 3ciclos, en régimen on-off con TNS o con AZLI (máximo 3-6meses), o 3-6meses de forma continua, con colistimetato (II-A). Si el cultivo es positivo, se debe repetir un nuevo ciclo con la misma pauta u otra (ciprofloxacino más un antibiótico inhalado no utilizado en el primer ciclo) (III-A). Tras finalizar el segundo ciclo se realizará un nuevo cultivo y, si continúa positivo, se aplicará el protocolo de la infección crónica (I-A) con, al menos, un cultivo de seguimiento cada 3meses (III-A).

No hay datos concluyentes sobre el número de veces que deben repetirse los ciclos de erradicación tras un primer fracaso. En los pacientes en los que persista P.aeruginosa tras la segunda pauta erradicadora, se podrían intentar otras estrategias, por ejemplo antibióticos inhalados e intravenosos simultáneamente (I-B), o aplicar el protocolo de infección crónica (I-A)3. Si aparece P.aeruginosa después de un año de cultivos negativos, se considerará como otra primoinfección (III-A).

Tratamiento en la infección crónica

La administración prolongada de antibióticos ha demostrado eficacia en la infección crónica por P.aeruginosa (I-A)92. La vía de elección es la inhalada (I-A)10,93. Los ensayos comparativos de antibióticos inhalados tienen limitaciones, ya que no suelen incluir pacientes sin tratamiento previo para los antibióticos ensayados.

El colistimetato de sodio ha mostrado eficacia cuando se utiliza sin periodos de descanso (III-A)2,94. La dosis habitual en adultos es 0,5-2MU, 2-3veces al día, y en niños 1MU, 2-3veces al día. No obstante, con algunos nebulizadores la dosis puede reducirse a la mitad. En un ensayo en pacientes tratados previamente en su mayoría con colistimetato de sodio, se comparó con TNS. En ambos grupos, el descenso del recuento de P.aeruginosa fue significativo, aunque solo se observó una mejoría significativa de la función pulmonar con TNS95.

El colistimetato en polvo seco (Colobreathe®, Forest Laboratories) (125mg/12h) está indicado en pacientes mayores de 6años con infección bronquial crónica por P.aeruginosa72, demostrando seguridad y no inferioridad respecto a TNS. TNS (300mg/5ml/12h), en periodos on-off de 28días, mejora significativamente el FEV1, disminuye la densidad de P.aeruginosa en el esputo, las hospitalizaciones, el uso de antibióticos intravenosos y las exacerbaciones (I-A)57,96, incluso en pacientes con afectación pulmonar leve-moderada96. Tambien mejora la calidad de vida. Un estudio reciente sugiere la reducción de la mortalidad en pacientes con infección crónica97. Existe otra formulación nebulizada de tobramicina (Bramitob®, Chiesi), con la misma posología pero más concentrada (300mg/4ml), con lo que se reduce el tiempo de nebulización98.

Recientemente se ha aprobado la tobramicina en polvo seco (TIP™, TOBI® Podhaler®, Novartis). Su eficacia y su tolerabilidad son similares a las de TNS, aunque con mayor incidencia de tos99,100. La dosis es de 112mg (4cápsulas de 28mg/12h), en periodos on-off de 28días.

Últimamente se ha incorporado el tratamiento AZLI (75mg/8h en periodos on-off de 28días) en pacientes con 6 o más años de edad (I-A)58,101. Al compararlo con TNS (300mg/5ml), AZLI mostró superioridad en diferentes parámetros102. El tratamiento fue seguido de un periodo de extensión en diseño abierto, con 3ciclos de AZLI, manteniéndose los beneficios obtenidos en los primeros 6meses.

En resumen, las opciones terapéuticas en la infección bronquial crónica son diversas e incluyen antibioterapia inhalada continua con colistimetato de sodio, o intermitente (periodos on-off de 28días) con TNS o AZLI (tabla 5). La constatación de que la mayoría de los beneficios conseguidos durante el tratamiento disminuyen durante los periodos de descanso57,58,102 ha llevado a plantear otras pautas, entre ellas antibióticos inhalados de manera continua, alternándolos/rotándolos, o incluso acortando el tratamiento (por ejemplo, ciclos on-off de 14días) (III-A)103. Las combinaciones han demostrado eficacia in vitro y en animales104. Están en fase de ensayo clínico y podrían limitar el desarrollo de resistencias.

Se recomienda que los antibióticos inhalados se administren, preferiblemente, con los nebulizadores con los que se hayan realizado los ensayos clínicos (III-A). El efecto secundario más frecuente es el broncoespasmo, por lo que se recomienda la administración previa de un broncodilatador de acción rápida. En los pacientes tratados con antibióticos inhalados con efectos ototóxicos y/o nefrotóxicos debería hacerse un control anual de la función renal y auditiva.

Tratamiento de las exacerbaciones

Las exacerbaciones aumentan la mortalidad y se asocian con un deterioro respiratorio y de la calidad de vida. A pesar de su importancia, no existe una definición consensuada de exacerbación105,106. En general se acepta que, si el paciente presenta 2 o más de los síntomas o signos incluidos en la tabla 2, debería recibir tratamiento antimicrobiano (III-A)1,105,107. En los lactantes y preescolares, la clínica puede ser más sutil.

Aunque la elección del tratamiento empírico se basa generalmente en los estudios de sensibilidad obtenidos en la última muestra respiratoria, la sensibilidad in vitro no siempre se correlaciona con la respuesta clínica (III-A). Tradicionalmente se emplean 2 antimicrobianos con diferente mecanismo de acción con el objetivo de favorecer su actuación y reducir la selección de mutantes resistentes. Aunque no hay evidencias suficientes, las guías recomiendan la biterapia en las exacerbaciones graves y en pacientes con afectación pulmonar más grave1,4 (III-C). En las exacerbaciones leves-moderadas debe iniciarse tratamiento con ciprofloxacino (15-20mg/kg/12h, 2-3semanas) por vía oral (III-B)106. En las exacerbaciones graves, o cuando el tratamiento oral no haya sido eficaz, suele recomendarse una combinación de un β-lactámico antipseudomónico (piperacilina/tazobactam, ceftazidima, cefepima, aztreonam, imipenem, meropenem o doripenem) con un aminoglucósido (habitualmente tobramicina) o una fluoroquinolona (II-B)105,106. Deben emplearse dosis altas por la dificultad que tienen para penetrar en las secreciones respiratorias y porque algunos antimicrobianos, especialmente los aminoglucósidos, tienen un aclaramiento renal más rápido en estos pacientes60,64,107.

El colistimetato de sodio también ha mostrado eficacia cuando se administra por vía intravenosa (III-A)2,108, debiendo vigilarse la función renal. Suele reservarse para cepas multirresistentes, o si fracasan los tratamientos habituales. No hay evidencias suficientes para recomendar la supresión o la continuación del antibiótico inhalado en los pacientes tratados con el mismo antibiótico por vía intravenosa4, pero hay que considerar que puede aumentar la toxicidad (III-C). Se desaconseja el tratamiento de las exacerbaciones solo con antibióticos inhalados (III-D).

No hay evidencia suficiente para recomendar la administración de β-lactámicos en infusión continua, por lo que se sigue recomendando la dosificación intermitente (II-C)4. En los niños se recomiendan los aminoglucósidos una vez al día (B-II) por el menor riesgo de daño renal109. En adultos no existen evidencias sobre la frecuencia de dosis. El tratamiento con estos fármacos debe monitorizarse con niveles séricos y función renal (III-A). Si los ciclos con aminoglucósidos son frecuentes, deberían realizarse audiometrías (III-A).

Aunque no hay evidencia suficiente para determinar el tiempo que debe durar el tratamiento de la exacerbación110, se recomienda mantener la pauta hasta la resolución de los síntomas y recuperar la función pulmonar (III-C). Habitualmente se consigue en 2semanas111, excepto en casos de P.aeruginosa multirresistente o de pacientes con afectación pulmonar muy grave, en los que es necesario prolongar el tratamiento.

El tratamiento intravenoso domiciliario proporciona mayor calidad de vida, puede ser coste-efectivo (III-A) y debe realizarse en función de la situación del paciente y de los recursos disponibles112. Se recomienda incrementar la fisioterapia respiratoria durante las exacerbaciones y mantener el resto de las terapias crónicas (III-A)4.

Tratamiento antiinflamatorio

Un aspecto característico en la vía respiratoria del paciente con FQ es la intensa respuesta inflamatoria que, si bien inicialmente trata de frenar la infección, acaba siendo dañina113. La introducción precoz de antiinflamatorios podría limitar sus efectos y retrasar el deterioro pulmonar114. Las estrategias utilizadas son:

  • Macrólidos. Modulan la producción de citoquinas, inhiben la síntesis de proteínas bacterianas y atenúan factores de virulencia y la formación de biopelículas115,116. La azitromicina oral es el fármaco de elección, aunque faltan estudios de su efecto a largo plazo, sobre todo en niños diagnosticados por cribado neonatal31. Se aconseja su utilización en pacientes mayores de 6años infectados por P.aeruginosa, 3días/semana, en una sola dosis diaria (10mg/kg en pacientes con <40kg o 500mg en >40kg), durante un periodo mínimo de 4-6meses (I-B)6,92,117,118. No debe utilizarse si existe infección por micobacterias no tuberculosas, ya que los macrólidos son parte del tratamiento. Si se detecta durante el tratamiento, debe interrumpirse para evitar la inducción de resistencias. En todos los pacientes debería realizarse un control del QT al inicio del tratamiento y, al menos, una vez al año (III-B).

  • Ibuprofeno. A dosis elevadas consigue una mejoría radiológica y nutricional, reduce el número de hospitalizaciones y recupera significativamente el FEV1118-121. Aunque está ligado a efectos secundarios121,122, su uso estaría indicado en niños >6años con función pulmonar con FEV1>60%92 y sin medicamentos nefrotóxicos120 (I-C). No hay evidencias en <6años92.

  • Corticoides sistémicos. Controlan la inflamación de las células bronquiales123. La prednisona (1-2mg/kg) en días alternos y a largo plazo (4años) produce un enlentecimiento del daño pulmonar y mejora, aunque de forma transitoria, los valores espirométricos123, especialmente en niños con enfermedad pulmonar leve114,124. Los efectos adversos son significativos y solo está probada una buena relación beneficio/riesgo en la aspergilosis pulmonar alérgica, broncoespasmo intratable, enfermedad grave de la pequeña vía aérea y enfermedad terminal, siendo preferible utilizar preparados sin recubrimiento entérico (I-C)92,114.

  • Corticoides inhalados. Ningún estudio prospectivo, aleatorizado y controlado con placebo ha demostrado beneficios en el paciente con FQ, por lo que se desaconseja su uso rutinario92,125. Solo se recomiendan en pacientes con hiperreactividad bronquial documentada (I-C). Tienen un efecto antiinflamatorio sobre las células epiteliales bronquiales. Reducen la caída del FEV1, aunque con efectos secundarios126-128.

Medidas de control epidemiológico

La importancia del retrasar la adquisición de P.aeruginosa hace necesaria la adopción de medidas para prevenir la primoinfección y transmisión entre pacientes (III-A). En general se desconoce la fuente de adquisición, aunque hay reservorios ambientales, especialmente lugares húmedos y calientes. No se encuentra en el mar, ya que la alta concentración de sal inhibe su crecimiento. Las duchas y piscinas son generalmente seguras por la cloración, aunque se ha alertado del riesgo en piscinas de hidroterapia y jacuzzis. P.aeruginosa se encuentra frecuentemente en el ambiente hospitalario, sobre todo en UCI, pero con medidas adecuadas no suponen una fuente importante de infección. Los nebulizadores de pacientes con infección crónica no son habitualmente portadores de P.aeruginosa129, aunque los equipos contaminados pueden ser vehículos de infección cruzada. La transmisión suele ocurrir por contacto directo, gotas y fómites. P.aeruginosa no mucoide sobrevive 24h en superficies inanimadas y la mucoide 48h, incluso 8días en el esputo sobre una superficie seca130. Para evitar la transmisión por gotas, las guías establecen 2m de distancia mínima entre pacientes y recomiendan la utilización de mascarillas19,131, aunque su uso rutinario no se recoge en todas las guías132 (III-C).

Existen evidencias de infecciones cruzadas en campamentos, reuniones, consultas y hospitales, por lo que se recomiendan medidas preventivas (tabla 6)129,133-136. Es aconsejable monitorizar nuevas adquisiciones de P.aeruginosa, sobre todo las hipertransmisibles y multirresistentes (III-A). Se recomienda el genotipado de P.aeruginosa para documentar transmisiones e investigar fuentes de infección (III-C).

Tabla 6.

Medidas de control epidemiológico en diferentes ámbitos en el paciente con fibrosis quística e infección bronquial por Pseudomonas aeruginosa

Medida  Extrahospitalario/Domicilio  Consulta externa  Hospitalización 
Seguir las medidas generales de control de infección de cada centro y disponer de un manual de control de infección adaptado al centro y a los pacientes con FQ  −  III-A  III-A 
Mantener una adecuada higiene (lavado de manos) de pacientes, familiares y personal  III-A  III-A  III-A 
Mantener una distancia mínima de 2 metros entre pacientes  III-A  III-A  III-A 
No compartir con otros pacientes aparatos para pruebas funcionales y atención sanitaria (espirómetros, fonendoscopios, pulsioxímetros…)  −  III-B  III-B 
Limpieza de superficies y aparatos después de la atención de cada paciente  −  III-A  III-A 
Implantar medidas de barrera (mascarillas, batas desechables…) en pacientes con infección por microorganismos multirresistentes o hipertransmisibles, exacerbación o síntomas respiratorios (tos, estornudos…)  III-Aa  III-A  III-A 
Segregación de pacientes según el microorganismo infectante (por ejemplo, P. aeruginosa, S. aureus) y tipo de infección (intermitente, crónica)  −  III-Aa  III-Aa 
Segregación de pacientes infectados por aislados de P. aeruginosa multirresistentes o hipertransmisibles  III-A  III-A  III-A 
Atención de pacientes por personal sanitario específico en función del tipo de infección, presencia de patógenos multirresistentes o hipertransmisibles  −  III-C  III-C 
Establecer protocolos en la atención por el fisioterapeuta que incluya lavado de manos, uso de guantes, batas desechables…  III-Bb  III-B  III-B 
Disponibilidad de juguetes, libros, etc., propios de cada paciente  III-Cc  III-C  III-C 
Utilización de superficies de cobre  −  III-Ca  III-Ca 
Informar del estadio de infección al paciente y de las medidas de prevención de infección  III-C  III-C  III-C 
Informar a responsables escolares y segregar en las aulas a los pacientes con infección por microorganismos multirresistentes o hipertransmisibles  III-C  −  − 
No asistir a campamentos, reuniones, vacaciones conjuntas con otros pacientes con fibrosis quística  III-B  −  − 
Utilizar habitaciones diferentes en hermanos con FQ con zonas separadas para el tratamiento nebulizado y la fisioterapia  III-C  −  − 
Limpieza y desinfección de equipos de aerosolización según instrucciones del fabricante  III-A  III-A  III-A 
No utilizar saunas, jacuzzis, balnearios  III-B  −  − 
a

Valorar en cada centro el coste efectividad de esta recomendación.

b

En atención domiciliaria.

c

En hermanos con fibrosis quística.

Farmacoeconomía

La FQ se asocia a un alto consumo de recursos, por lo que el aumento en la esperanza de vida genera un incremento del coste de la enfermedad137. Se han realizado estudios que abordan este análisis y que tienen en cuenta la gravedad y la cronicidad de la infección, las pruebas de laboratorio, la atención sanitaria, incluyendo la hospitalización, y los tratamientos137-142. En España, el coste directo se distribuye esencialmente en 45% fármacos, 19% consultas, 17% hospitalización y 12% pruebas médicas142. Globalmente, la infección por P.aeruginosa aumenta un 40-55% los costes137,141, siendo superior en el paciente crónico y en la mujer141. En este contexto, el análisis económico (coste-efectividad, coste-beneficio y coste-utilidad) adquiere una especial relevancia (tabla 7), aunque puede venir marcado por la diferencia en los precios de comercialización.

Tabla 7.

Aspectos clave en las intervenciones de coste-efectividad en el tratamiento de la infección bronquial por Pseudomonas aeruginosa en fibrosis quística

Intervención  Beneficios 
Tratamientos agresivos durante la primocolonización  Evitar la cronicidad y limitar la alta prevalencia de la infección crónica por P. aeruginosaDisminuir los costes asociados de la infección crónica 
Tratamiento supresor de la infección crónica  Reducción del deterioro pulmonar progresivo y mejora de la calidad de vida 
Tratamiento eficaz de las exacerbaciones  Reducción del deterioro pulmonar progresivo 
Reducir las hospitalizaciones en favor de otras estrategias, como la atención domiciliaria  Mayor calidad de vida y disminución de riesgos asociados a los ingresos hospitalarios 
Modificar la forma de administración de los antibióticos (perfusión extendida o continua, aumento de la dosis, disminución de tiempo entre dosis…)  Favorecer la adecuación de los tratamientos a criterios PK/PD de eficacia terapéutica 
Asegurar el cumplimiento del tratamiento en los pacientes con infección por P. aeruginosa  Reducción del deterioro pulmonar progresivo 
Medida de la calidad de vida  Evaluación de las intervenciones realizadas 
Perspectiva de futuro

El tratamiento de la infección bronquial por P.aeruginosa se ha construido a partir de experiencias clínicas y evidencias con un número reducido de antimicrobianos. Próximamente se dispondrá en España de nuevas formulaciones y antibióticos (colistina en polvo seco, amikacina-liposomal, levofloxacino en solución y ciprofloxacino en polvo seco) que pueden abrir nuevos esquemas de tratamiento, incluyendo combinaciones, rotación y alternancia de compuestos. Con ello se pretende disminuir y distanciar las exacerbaciones, limitar el desarrollo de resistencias, reducir la caída de la función pulmonar y el uso de antibióticos orales durante los períodos de descanso en los esquemas on-off. Asimismo, se investigan dispositivos de nebulización que faciliten su uso y mejoren la adherencia. También se profundiza en el manejo de fármacos antiinflamatorios y su influencia en la infección, en la búsqueda de biomarcadores y en estudios de coste-beneficio que comparen diferentes alternativas terapéuticas. Por último, las terapias dirigidas a mejorar la funcionalidad de la proteína CFTR143 pueden cambiar el paradigma de la utilización de los antimicrobianos en la infección bronquial por P.aeruginosa en FQ.

Financiación

Los trabajos de investigación de R. Cantón, A. Oliver, L. Martínez-Martínez en el área de la fibrosis quística y Pseudomonas aeruginosa están cofinanciados por el Instituto de Salud CarlosIII (Ministerio de Economía y Competitividad) (ref. PI12/00734 y PI12/00103) y el European Development Regional Fund «A Way to Achieve Europe», ERDF a través de la Red Española de Investigación en Patología Infecciosa (REIPI RD12/0015).

Conflictos de intereses

R. Cantón ha participado en actividades de formación promovidas y financiadas por Astra-Zeneca, Gilead, Novartis y Praxis Pharmaceutical y desarrollado proyectos de investigación para Astra-Zeneca; L. Máiz ha participado en comités de expertos y actividades de formación promovidas y financiadas por Chiesi, Gilead, Novartis, Praxis y Vertex; A. Escribano ha participado en actividades de formación promovidas y financiadas por Chiesi, Novartis y Praxis y en comités de expertos con Gilead; C. Olveira ha participado en comités de expertos y actividades de formación promovidas y financiadas por Gilead, Novartis, Praxis y Vertex; A. Oliver ha desarrollado proyectos de investigación financiados por Gilead; O. Asensio ha participado en actividades de formación promovidas y financiadas por Chiesi, Gilead, Novartis y Praxis y en comités de expertos y proyectos de investigación con GSK y Novartis; S. Gartner ha participado en actividades de formación promovidas y financiadas por Chiesi, Gilead, Novartis, Praxis y Vertex; E. Roma ha participado en actividades de formación promovidas y financiadas por Gilead, Novartis y Praxis; E. Quintana-Gallego ha participado en comités de expertos y actividades de formación promovidas y financiadas por Gilead, Novartis y Praxis; R. Girón ha participado en actividades de formación promovidas y financiadas por Chiesi, Gilead, Novartis y Praxis; M.I. Barrio ha participado en actividades de formación promovidas y financiadas por Chiesi, Gilead, Novartis, Praxis y Vertex; M.D. Pastor ha participado en actividades de formación promovidas y financiadas por Gilead; C. Prados ha participado en actividades de formación promovidas y financiadas por Gilead, Novartis y Praxis; J. Barberán ha participado en actividades de formación promovidas y financiadas por Astra-Zeneca y Gilead; L. Martínez-Martínez ha participado en actividades de formación promovidas y financiadas y proyectos de investigación con Astra-Zeneca, GSK, Janssen-Cilag, MSD y Pfizer; C. Vázquez ha participado en actividades de formación promovidas y financiadas por Gilead, Novartis, Praxis y Vertex; J. de Gracia ha participado en comités de expertos y actividades de formación promovidas y financiadas por Chiesi, Gilead, Novartis, Praxis; A. Solé ha participado en actividades de formación promovidas y financiadas por Gilead, Novartis, Vertex y Praxis. A. Salcedo, M.T Martínez-Martínez, J.J Castón y J.L. Poveda no presentan conflictos de intereses.

Bibliografía
[1]
R. Cantón, N. Cobos, J. de Gracia, F. Baquero, J. Honorato, S. Gartner, Spanish Consensus Group for Antimicrobial Therapy in the Cystic Fibrosis Patient, et al.
Antimicrobial therapy for pulmonary pathogenic colonisation and infection by Pseudomonas aeruginosa in cystic fibrosis patients.
Clin Microbiol Infect., 11 (2005), pp. 690-703
[2]
UK Cystic Fibrosis Trust. Antibiotic treatment for cystic fibrosis. Report of the UK Cystic Fibrosis Trust Antibiotic Working Group, 2009 [consultado 2 Ene 2015]. Disponible en: https://www.cysticfibrosis.org.uk/media/82010/CD_Antibiotic_treatment_for_CF_May_09.pdf
[3]
G. Döring, P. Flume, H. Heijerman, J.S. Elborn, for the Consensus Study Group.
Treatment of lung infection in patients with cystic fibrosis: Current and future strategies.
J Cyst Fibros., 11 (2012), pp. 461-479
[4]
P.A. Flume, P.J. Mogayzel Jr., K.A. Robinson, C.H. Goss, R.L. Rosenblatt, R.J. Kuhn, Clinical Practice Guidelines for Pulmonary Therapies Committee, et al.
Cystic fibrosis pulmonary guidelines: Treatment of pulmonary exacerbations.
Am J Respir Crit Care Med., 180 (2009), pp. 802-808
[5]
M.I. Barrio Gómez de Agüero, G. García Hernández, S. Gartner, y Grupo de Trabajo de Fibrosis Quística.
Protocolo de diagnóstico y seguimiento de los pacientes con fibrosis quística.
An Pediatr (Barc), 71 (2009), pp. 250-264
[6]
P.J. Mogayzel Jr., E.T. Naureckas, K.A. Robinson, G. Mueller, D. Hadjiliadis, J.B. Hoag, Pulmonary Clinical Practice Guidelines Committee, et al.
Cystic fibrosis pulmonary guidelines. Chronic medications for maintenance of lung health.
Am J Respir Crit Care Med., 187 (2013), pp. 680-689
[7]
S. Gartner, N. Cobos.
Cribado neonatal para la fibrosis quística.
An Pediatr (Barc)., 71 (2009), pp. 481-482
[8]
G.L. Plosker.
Aztreonam lysine for inhalation solution in cystic fibrosis.
[9]
L. Máiz, R.M. Girón, C. Olveira, E. Quintana, A. Lamas, D. Pastor, et al.
Inhaled antibiotics for the treatment of chronic bronchopulmonary Pseudomonas aeruginosa infection in cystic fibrosis: Systematic review of randomized controlled trials.
Expert Opin Pharmacother., 14 (2013), pp. 1135-1149
[10]
G. Ryan, M. Singh, K. Dwan.
Inhaled antibiotics for long-term therapy in cystic fibrosis.
Cochrane Database Syst Rev, 3 (2011), pp. CD001021
[11]
A.R. Hauser, M. Jain, M. Bar-Meir, S.A. McColley.
Clinical significance of microbial infection and adaptation in cystic fibrosis.
Clin Microbiol Rev., 24 (2011), pp. 29-70
[12]
O. Ciofu, C.R. Hansen, N. Høiby.
Respiratory bacterial infections in cystic fibrosis.
Curr Opin Pulm Med., 19 (2013), pp. 251-258
[13]
A. Folkesson, L. Jelsbak, L. Yang, H.K. Johansen, O. Ciofu, N. Høiby, et al.
Adaptation of Pseudomonas aeruginosa to the cystic fibrosis airway: An evolutionary perspective.
Nat Rev Microbiol., 10 (2012), pp. 841-851
[14]
J.L. Burns, J.M. Rolain.
Culture-based diagnostic microbiology in cystic fibrosis: Can we simplify the complexity?.
J Cyst Fibros, 13 (2014), pp. 1-9
[15]
A. Oliver, T. Alarcón, E. Caballero, R. Cantón.
Diagnóstico microbiológico de la colonización-infección broncopulmonar en el paciente con fibrosis quística.
Enferm Infecc Microbiol Clin., 27 (2009), pp. 89-94
[16]
W.A. Prescott, J.L. Nagel.
Extended-interval once-daily dosing of aminoglycosides in adult and pediatric patients with cystic fibrosis.
Pharmacotherapy, 30 (2010), pp. 95-108
[17]
C. Stockmann, C.M. Sherwin, J.T. Zobell, D.C. Young, C.D. Waters, M.G. Spigarelli, et al.
Optimization of anti-pseudomonal antibiotics for cystic fibrosis pulmonary exacerbations: III. Fluoroquinolones.
Pediatr Pulmonol., 48 (2013), pp. 211-220
[18]
D.C. Young, J.T. Zobell, C.D. Waters, K. Ampofo, C. Stockmann, C.M. Sherwin, et al.
Optimization of anti-pseudomonal antibiotics for cystic fibrosis pulmonary exacerbations: IV. Colistimethate sodium.
Pediatr Pulmonol., 48 (2013), pp. 1-7
[19]
L. Saiman.
Infection prevention and control in cystic fibrosis.
Current Opin Infect Dis., 24 (2011), pp. 390-395
[20]
P.A. Gross, T.L. Barrett, P. Dellinger, P.J. Krause, W.J. Martone, J.E. McGowan Jr., et al.
Purpose of quality standards for Infectious Diseases Infectious Diseases Society of America.
Clin Infect Dis, 18 (1994), pp. 421
[21]
R.B. Troxler, W.C. Hoover, L.J. Britton, A.M. Gerwin, S.M. Rowe.
Clearance of initial mucoid Pseudomonas aeruginosa in patients with CF.
Pediatr Pulmonol., 47 (2012), pp. 1113-1122
[22]
C.S. Dalboge, T. Pressler, N. Hoiby, J.G. Nielsen, H. Krogh Johansen.
A cohort study of the Copenhagen CF-Centre eradication strategy against Staphylococcus aureus.
J Cyst Fibros., 12 (2013), pp. 42-48
[23]
P.D. Sly, C.L. Gangell, L. Chen, R.S. Ware, S. Ranganathan, L.S. Mott, AREST CF Investigators, et al.
Risk factors for bronchiectasis in children with cystic fibrosis.
N Engl J Med., 368 (2013), pp. 1963-1970
[24]
P. Stafler, J.C. Davies, I.M. Balfour-Lynn, M. Rosenthal, A. Bush.
Bronchoscopy in cystic fibrosis infants diagnosed by newborn screening.
Pediatr Pulmonol., 46 (2011), pp. 696-700
[25]
F. Ratjen, H. Walter, M. Haug, C. Meisner, H. Grassemann, G. Döring.
Diagnostic value of serum antibodies in early Pseudomonas aeruginosa infection in cystic fibrosis patients.
Pediatr Pulmonol., 42 (2007), pp. 249-255
[26]
M. Anstead, S.L. Heltshe, U. Khan, J.T. Barbieri, M. Langkamp, G. Döring, et al.
Pseudomonas aeruginosa serology and risk for re-isolation in the EPIC trial.
J Cyst Fibros., 12 (2013), pp. 147-153
[27]
P. Deschagh, S. van Daele, F. de Baets, M. Vaneechoutte.
PCR and the detection of Pseudomonas aeruginosa in respiratory samples of CF patients. A literature review.
J Cyst Fibros., 10 (2011), pp. 293-297
[28]
P.C. Goeminne, T. Vandendriessche, J. van Eldere, B.M. Nicolai, M.L. Hertog, L.J. Dupont.
Detection of Pseudomonas aeruginosa in sputum headspace through volatile organic compound analysis.
Respir Res., 13 (2012), pp. 87
[29]
M. Rosenfeld, J. Emerson, S. McNamara, K. Joubran, G. Retsch-Bogart, G.R. Graff, EPIC Study Group Participating Clinical Sites, et al.
Baseline characteristics and factors associated with nutritional and pulmonary status at enrollment in the cystic fibrosis EPIC observational cohort.
Pediatr Pulmonol., 45 (2010), pp. 934-944
[30]
Cystic Fibrosis Foundation.
Cystic Fibrosis Foundation Patient Registry 2011. Annual Data Report.
Cystic Fibrosis Foundation, (2013),
[31]
K.O. McKay, P.J. Cooper, P.P. van Asperen.
Segregation of children with CF diagnosed via newborn screening and acquisition of Pseudomonas aeruginosa.
J Cyst Fibros., 8 (2009), pp. 400-404
[32]
J. Emerson, M. Rosenfeld, S. McNamara, B. Ramsey, R.L. Gibson.
Pseudomonas aeruginosa and other predictors of mortality and morbidity in young children with cystic fibrosis.
Pediatr Pulmonol., 34 (2002), pp. 91-100
[33]
C.L. Ren, M. Rosenfeld, O.H. Mayer, S.D. Davis, M. Kloster, R.G. Castile, et al.
Analysis of the associations between lung function and clinical features in preschool children with cystic fibrosis.
Pediatr Pulmonol., 47 (2012), pp. 574-581
[34]
D. Taylor-Robinson, M. Whitehead, F. Diderichsen, H.V. Olesen, T. Pressler, R.L. Smyth, et al.
Understanding the natural progression in %FEV1 decline in patients with cystic fibrosis: A longitudinal study.
Thorax., 68 (2013), pp. 294-295
[35]
M. Vendrell, J. de Gracia, C. Olveira, M.A. Martínez, R. Girón, L. Máiz, et al.
Diagnosis and treatment of bronchiectasis.
Arch Bronconeumol., 44 (2008), pp. 629-640
[36]
Z. Li, M.R. Kosorok, P.M. Farrell, A. Laxova, S.E. West, C.G. Green, et al.
Longitudinal development of mucoid Pseudomonas aeruginosa infection and lung disease progression in children with cystic fibrosis.
JAMA., 293 (2005), pp. 581-588
[37]
T. Ferkol, M. Rosenfeld, C.E. Milla.
Cystic fibrosis pulmonary exacerbations.
J Pediatr., 148 (2006), pp. 259-264
[38]
W.E. Regelmann, M.S. Schechter, J.S. Wagener, W.J. Morgan, D.J. Pasta, E.P. Elkin, et al.
Pulmonary exacerbations in cystic fibrosis: Young children with characteristic signs and symptoms.
Pediatr Pulmonol., 48 (2013), pp. 649-657
[39]
Y. Belessis, B. Dixon, G. Hawkins, J. Pereira, J. Peat, R. MacDonald, et al.
Early cystic fibrosis lung disease detected by bronchoalveolar lavage and lung clearance index.
Am J Respir Crit Care Med., 185 (2012), pp. 862-873
[40]
P. Aurora.
Multiple-breath inert gas washout test and early cystic fibrosis lung disease.
Thorax., 65 (2010), pp. 373-374
[41]
C.M. Owens, P. Aurora, S. Stanojevic, A. Bush, A. Wade, C. Oliver, et al.
Lung clearance index and HRCT are complementary markers of lung abnormalities in young children with CF.
Thorax., 66 (2011), pp. 481-488
[42]
G. Taccetti, S. Campana, F. Festini, M. Mascherini, G. Döring.
Early eradication therapy against Pseudomonas aeruginosa in cystic fibrosis patients.
Eur Respir J., 26 (2005), pp. 1-4
[43]
B. Linnane, P. Robinson, S. Ranganathan, S. Stick, C. Murray.
Role of high-resolution computed tomography in the detection of early CF lung disease.
Paediatr Respir Rev., 9 (2008), pp. 168-174
[44]
C. Young, C. Owens.
‘To CT or not to CT? That is the question’: Outcome surrogates for surveillance in childhood cystic fibrosis.
[45]
H.A. Tiddens, P.A. de Jong.
Update on the application of chest computed tomography scanning to cystic fibrosis.
Curr Opin Pulm Med., 12 (2006), pp. 433-443
[46]
P.A. De Jong, H.A. Tiddens, M.H. Lequin, T.E. Robinson, A.S. Brody.
Estimation of the radiation dose from CT in cystic fibrosis.
Chest., 133 (2008), pp. 1289-1291
[47]
L.S. Mott, J. Park, C.P. Murray, C.L. Gangell, N.H. de Klerk, P.J. Robinson, et al.
Progression of early structural lung disease in young children with cystic fibrosis assessed using computed tomography.
[48]
T.E. Robinson, A.N. Leung, X. Chen, R.B. Moss, M.J. Emond.
Cystic fibrosis HRCT scores correlate strongly with Pseudomonas infection.
Pediatr Pulmonol., 44 (2009), pp. 1107-1117
[49]
T.W. Folescu, A. Marques Ede, M.C. Boechat, P. Daltro, L.Y. Higa, R.W. Cohen.
High-resolution computed tomography scores in cystic fibrosis patients colonized with Pseudomonas aeruginosa or Staphylococcus aureus.
J Bras Pneumol., 38 (2012), pp. 41-49
[50]
M. Loeve, K. Gerbrands, W.C. Hop, M. Rosenfeld, I.C. Hartmann, H.A. Tiddens.
Bronchiectasis and pulmonary exacerbations in children and young adults with cystic fibrosis.
Chest., 140 (2011), pp. 178-185
[51]
European Medicines Agency. Report of the workshop on endpoints for cystic fibrosis clinical trials, London, 27-28 September 2012 [consultado 3 Ene 2015]. Disponible en: http://www.ema.europa.eu/docs/en_GB/document_library/Report/2012/12/WC500136159.pdf
[52]
K. Aanaes.
Bacterial sinusitis as a focus for initial lung colonisation and chronic lung infection in patients with cystic fibrosis.
J Cyst Fibros., 12 (2013), pp. 1-20
[53]
T.W.R. Lee, K.G. Brownlee, S.P. Conway, M. Denton, J.M. Littlewood.
Evaluation of a new definition for chronic Pseudomonas aeruginosa infection in cystic fibrosis patients.
J Cystic Fibros., 2 (2003), pp. 29-34
[54]
M. Proesmans, W. Balinska-Miskiewicz, L. Dupont, X. Bossuyt, J. Verhaegen, N. Hoiby, et al.
Evaluating the ‘Leeds criteria’ for Pseudomonas aeruginosa infection in a cystic fibrosis centre.
Eur Respir J., 27 (2006), pp. 937-943
[55]
S.C. Langton Hewer, A.R. Smyth.
Antibiotic strategies for eradicating Pseudomonas aeruginosa in people with cystic fibrosis.
Cochrane Database Syst Rev., (2009), pp. CD004197
[56]
K.J. Littlewood, K. Higashi, J.P. Jansen, G. Capkun-Niggli, M.M. Balp, G. Doering, et al.
A network meta-analysis of the efficacy of inhaled antibiotics for chronic Pseudomonas infections in cystic fibrosis.
J Cyst Fibros., 11 (2012), pp. 419-426
[57]
B.W. Ramsey, M.S. Pepe, J.M. Quan, K.L. Otto, A.B. Montgomery, J. Williams-Warren, et al.
Intermittent administration of inhaled tobramycin in patients with cystic fibrosis. Cystic Fibrosis Inhaled Tobramycin Study Group.
N Engl J Med., 340 (1999), pp. 23-30
[58]
K.S. McCoy, A.L. Quittner, C.M. Oermann, R.L. Gibson, G.Z. Retsch-Bogart, A.B. Montgomery.
Inhaled aztreonam lysine for chronic airway Pseudomonas aeruginosa in cystic fibrosis.
Am J Respir Crit Care Med., 178 (2008), pp. 921-928
[59]
D.J. Touw, A.A. Vinks, J.W. Mouton, A.M. Horrevorts.
Pharmacokinetic optimisation of antibacterial treatment in patients with cystic fibrosis Current practice and suggestions for future directions.
Clin Pharmacokinet., 35 (1998), pp. 437-459
[60]
J.T. Zobell, D.C. Young, C.D. Waters, C. Stockmann, K. Ampofo, C.M. Sherwin, et al.
Optimization of anti-pseudomonal antibiotics for cystic fibrosis pulmonary exacerbations: I. Aztreonam and carbapenems.
Pediatr Pulmonol., 47 (2012), pp. 1147-1158
[61]
J.T. Zobell, D.C. Young, C.D. Waters, K. Ampofo, C. Stockmann, C.M. Sherwin, et al.
Optimization of anti-pseudomonal antibiotics for cystic fibrosis pulmonary exacerbations: VI. Executive summary.
Pediatr Pulmonol., 48 (2013), pp. 525-537
[62]
D.J. Touw.
Clinical pharmacokinetics of antimicrobial drugs in cystic fibrosis.
Pharm World Sci., 20 (1998), pp. 149-160
[63]
E. Rey, J.M. Treluyer, G. Pons.
Drug disposition in cystic fibrosis.
Clin Pharmacokinet., 35 (1998), pp. 313-329
[64]
D.C. Young, J.T. Zobell, C. Stockmann, C.D. Waters, K. Ampofo, C.M. Sherwin, et al.
Optimization of anti-pseudomonal antibiotics for cystic fibrosis pulmonary exacerbations: V. Aminoglycosides.
Pediatr Pulmonol., 48 (2013), pp. 1047-1061
[65]
J.M. Butterfield, T.P. Lodise, S. Beegle, J. Rosen, J. Farkas, M.P. Pai.
Pharmacokinetics and pharmacodynamics of once-daily administration of intravenous tobramycin in adult patients with cystic fibrosis hospitalized for an acute pulmonary exacerbation.
Antimicrob Agents Chemother., 57 (2013), pp. 5175-5177
[66]
D.E. Geller, W.H. Pitlick, P.A. Nardella, W.G. Tracewell, B.W. Ramsey.
Pharmacokinetics and bioavailability of aerosolized tobramycin in cystic fibrosis.
Chest., 122 (2002), pp. 219-226
[67]
M.D. Macià, J.L. Pérez, S. Molin, A. Oliver.
Dynamics of mutator and antibiotic-resistant populations in a pharmacokinetic/pharmacodynamic model of Pseudomonas aeruginosa biofilm treatment.
Antimicrob Agents Chemother., 55 (2011), pp. 5230-5237
[68]
M. Manduru, L.B. Mihm, R.L. White, L.V. Friedrich, P.A. Flume, J.A. Bosso.
In vitro pharmacodynamics of ceftazidime against Pseudomonas aeruginosa isolates from cystic fibrosis patients.
Antimicrob Agents Chemother., 41 (1997), pp. 2053-2056
[69]
F. Ratjen, E. Rietschel, D. Kasel, R. Schwiertz, K. Starke, H. Beier, et al.
Pharmacokinetics of inhaled colistin in patients with cystic fibrosis.
J Antimicrob Chemother., 57 (2006), pp. 306-311
[70]
J. Li, K. Coulthard, R. Milne, R.L. Nation, S. Conway, D. Peckham, et al.
Steady-state pharmacokinetics of intravenous colistin methanesulphonate in patients with cystic fibrosis.
J Antimicrob Chemother., 52 (2003), pp. 987-992
[71]
R.V. Dudhani, J.D. Turnidge, K. Coulthard, R.W. Milne, C.R. Rayner, J. Li, et al.
Elucidation of the pharmacokinetic/pharmacodynamic determinant of colistin activity against Pseudomonas aeruginosa in murine thigh and lung infection models.
Antimicrob Agents Chemother., 54 (2010), pp. 1117-1124
[72]
A. Schuster, C. Haliburn, G. Döring, M.H. Goldman, for the Freedom Study Group.
Safety, efficacy and convenience of colistimethate sodium dry powder for inhalation (Colobreathe DPI) in patients with cystic fibrosis: A randomised study.
[73]
G.A. Tramper-Stranders, T.F. Wolfs, S. van Haren Noman, W.M. van Aalderen, A.F. Nagelkerke, M. Nuijsink, et al.
Controlled trial of cycled antibiotic prophylaxis to prevent initial Pseudomonas aeruginosa infection in children with cystic fibrosis.
Thorax., 65 (2010), pp. 915-920
[74]
H.K. Johansen, P.C. Gøtzsche.
Vaccines for preventing infection with Pseudomonas aeruginosa in cystic fibrosis.
Cochrane Database Syst Rev., 6 (2013), pp. CD001399
[75]
C. Vázquez, J. Elorz, F. Baranda, A. Sojo, J.I. Pijoan.
Early treatment of bronchial colonization with Pseudomonas aeruginosa in cystic fibrosis. Twelve-year experience.
J Cyst Fibros., 1 (2002), pp. 51
[76]
C. Vázquez, M. Municio, M. Corera, L. Gaztelurrutia, A. Sojo, J.C. Vitoria.
Early treatment of Pseudomonas aeruginosa colonization in cystic fibrosis.
Acta Paediatr., 82 (1993), pp. 308-309
[77]
H.G. Wiesemann, G. Steinkamp, F. Ratjen, A. Bauernfeind, B. Przyklenk, G. Döring, et al.
Placebo-controlled, double-blind, randomized study of aerosolized tobramycin for early treatment of Pseudomonas aeruginosa colonization in cystic fibrosis.
Pediatr Pulmonol., 25 (1998), pp. 88-92
[78]
R.L. Gibson, J. Emerson, S. McNamara, J.L. Burns, M. Rosenfeld, A. Yunker, et al.
Significant microbiological effect of inhaled tobramycin in young children with cystic fibrosis.
Am J Respir Crit Care Med., 167 (2003), pp. 841-849
[79]
G. Taccetti, E. Bianchini, L. Cariani, R. Buzzetti, D. Costantini, F. Trevisan, et al.
Early antibiotic treatment for Pseudomonas aeruginosa eradication in patients with cystic fibrosis: A randomised multicentre study comparing two different protocols.
Thorax., 67 (2012), pp. 853-859
[80]
F. Ratjen, A. Munck, P. Kho, G. Angyalosi, ELITE Study Group.
Treatment of early Pseudomonas aeruginosa infection in patients with cystic fibrosis: The ELITE trial.
Thorax., 65 (2010), pp. 286-291
[81]
S. Stick, H. Tiddens, P. Aurora, P. Gustafsson, S. Ranganathan, P. Robinson, et al.
Early intervention studies in infants and preschool children with cystic fibrosis: Are we ready?.
Eur Respir J., 42 (2013), pp. 527-538
[82]
P. Schelstraete, F. Haerynck, S. van Daele, S. Deseyne, F. de Baets.
Eradication therapy for Pseudomonas aeruginosa colonization episodes in cystic fibrosis patients not chronically colonized by P. aeruginosa.
J Cyst Fibros., 12 (2013), pp. 1-8
[83]
B. Frederiksen, C. Koch, N. Hoiby.
Antibiotic treatment of initial colonization with Pseudomonas aeruginosa postpones chronic infection and prevents deterioration of pulmonary function in cystic fibrosis.
Ped Pulmonol., 23 (1997), pp. 330-335
[84]
C.R. Hansen, T. Pressler, N. Høiby.
Early aggressive eradication therapy for intermittent Pseudomonas aeruginosa airway colonization in cystic fibrosis patients: 15 years experience.
J Cyst Fibros., 7 (2008), pp. 523-530
[85]
M.M. Treggiari, G. Retsch-Bogart, N. Mayer-Hamblett, U. Khan, M. Kulich, R. Kronmal, et al.
Comparative efficacy and safety of 4 randomized regimens to treat early Pseudomonas aeruginosa infection in children with cystic fibrosis.
Arch Pediatr Adolesc Med., 165 (2011), pp. 847-856
[86]
R.L. Gibson, J. Emerson, N. Mayer-Hamblett, J.L. Burns, S. McNamara, F.J. Accurso, et al.
Duration of treatment effect after tobramycin solution for inhalation in young children with cystic fibrosis.
Pediatr Pulmonol., 42 (2007), pp. 610-623
[87]
H.A.W. Tiddens, K. de Boeck, J.P. Clancy, M. Fayon, H.G.M. Arets, M. Bresnik, for the ALPINE Study Investigators, et al.
Open-label study of inhaled aztreonam for Pseudomonas eradication in children with cystic fibrosis: The ALPINE Study.
J Cyst Fibros., 14 (2015), pp. 111-119
[88]
M. Proesmans, F. Vermeulen, L. Boulanger, J. Verhaegen, K. de Boeck.
Comparison of two treatment regimens for eradication of Pseudomonas aeruginosa infection in children with cystic fibrosis.
J Cyst Fibros., 12 (2013), pp. 29-34
[89]
M. Fauvart, V.N. de Groote, J. Michiels.
Role of persister cells in chronic infections: Clinical relevance and perspectives on anti-persister therapies.
J Med Microbiol, 60 (2011), pp. 699-709
[90]
H. Levy, L.A. Kalish, C.L. Cannon, K.C. García, C. Gerard, D. Goldmann, et al.
Predictors of mucoid Pseudomonas colonization in cystic fibrosis patients.
Pediatr Pulmonol., 43 (2008), pp. 463-471
[91]
G.A. Tramper-Stranders, C.K. van der Ent, S. Molin, L. Yang, S.K. Hansen, M.H. Rau, et al.
Initial Pseudomonas aeruginosa infection in patients with cystic fibrosis: Characteristics of eradicated and persistent isolates.
Clin Microbiol Infect., 18 (2012), pp. 567-574
[92]
P.A. Flume, B.P. O'Sullivan, K.A. Robinson, C.H. Goss, P.J. Mogayzel Jr., D.B. Willey-Courand, et al.
Cystic fibrosis pulmonary guidelines: Chronic medications for maintenance of lung health.
Am J Respir Crit Care Med., 176 (2007), pp. 957-969
[93]
H. Heijerman, E. Westerman, S. Conway, D. Touw, G. Döring, Consensus Working Group.
Inhaled medication and inhalation devices for lung disease in patients with cystic fibrosis: A European consensus.
J Cyst Fibros., 8 (2009), pp. 295-315
[94]
T. Jensen, S.S. Pedersen, S. Garne, C. Heilmann, N. Høiby, C. Koch.
Colistin inhalation therapy in cystic fibrosis patients with chronic Pseudomonas aeruginosa lung infection.
J Antimicrob Chemother., 19 (1987), pp. 831-838
[95]
M.E. Hodson, C.G. Gallagher, J.R. Govan.
A randomised clinical trial of nebulised tobramycin or colistin in cystic fibrosis.
Eur Respir J., 20 (2002), pp. 658-664
[96]
T.D. Murphy, R.D. Anbar, L.A. Lester, S.Z. Nasr, B. Nickerson, D.R. van Devanter, et al.
Treatment with tobramycin solution for inhalation reduces hospitalizations in young CF subjects with mild lung disease.
Pediatr Pulmonol., 38 (2004), pp. 314-320
[97]
G.S. Sawicki, J.E. Signorovitch, J. Zhang, D. Latremouille-Viau, M. von Wartburg, E.Q. Wu, et al.
Reduced mortality in cystic fibrosis patients treated with tobramycin inhalation solution.
Pediatr Pulmonol., 47 (2012), pp. 44-52
[98]
A. Chuchalin, E. Csiszér, K. Gyurkovics, M.T. Bartnicka, D. Sands, N. Kapranov, et al.
A formulation of aerosolized tobramycin (Bramitob) in the treatment of patients with cystic fibrosis and Pseudomonas aeruginosa infection: A double-blind, placebo-controlled, multicenter study.
Paediatr Drugs., 9 (2007), pp. 21-31
[99]
M.W. Konstan, D.E. Geller, P. Minić, F. Brockhaus, J. Zhang, G. Angyalosi.
Tobramycin inhalation powder for P. aeruginosa infection in cystic fibrosis: The EVOLVE trial.
Pediatr Pulmonol., 46 (2011), pp. 230-238
[100]
M.W. Konstan, P.A. Flume, M. Kappler, R. Chiron, M. Higgins, F. Brockhaus, et al.
Safety, efficacy and convenience of tobramycin inhalation powder in cystic fibrosis patients: The EAGER trial.
J Cyst Fibros., 10 (2011), pp. 54-61
[101]
C.M. Oermann, G.Z. Retsch-Bogart, A.L. Quittner, R.L. Gibson, K.S. McCoy, A.B. Montgomery, et al.
An 18-month study of the safety and efficacy of repeated courses of inhaled aztreonam lysine in cystic fibrosis.
Pediatr Pulmonol., 45 (2010), pp. 1121-1134
[102]
B.M. Assael, T. Pressler, D. Bilton, M. Fayon, R. Fischer, R. Chiron, et al.
Inhaled aztreonam lysine vs. inhaled tobramycin in cystic fibrosis: A comparative efficacy trial.
J Cyst Fibros., 12 (2012), pp. 130-140
[103]
D. Lo, D.R. van Devanter, P. Flume, A. Smyth.
Aerosolized antibiotic therapy for chronic cystic fibrosis airway infections: Continuous or intermittent?.
Respir Med., 105 (2011), pp. S9-S17
[104]
G. Herrmann, L. Yang, H. Wu, Z. Song, H. Wang, N. Høiby, et al.
Colistin-tobramycin combinations are superior to monotherapy concerning the killing of biofilm Pseudomonas aeruginosa.
J Infect Dis., 202 (2010), pp. 1585-1592
[105]
D. Bilton, G. Canny, S. Conway, S. Dumcius, L. Hjelte, M. Proesmans, et al.
Pulmonary exacerbation: Towards a definition for use in clinical trials. Report from the EuroCareCF Working Group on outcome parameters in clinical trials.
J Cyst Fibros., 10 (2011), pp. S79-S81
[106]
N.C. Kraynack, M.D. Gothard, L.M. Falletta, J.T. McBride.
Approach to treating cystic fibrosis pulmonary exacerbations varies widely across US CF care centers.
Pediatr Pulmonol., 46 (2011), pp. 870-881
[107]
D.B. Sanders, L.R. Hoffman, J. Emerson, R.L. Gibson, M. Rosenfeld, G.J. Redding, et al.
Return of FEV1 after pulmonary exacerbation in children with cystic fibrosis.
Pediatr Pulmonol., 45 (2010), pp. 127-134
[108]
S.P. Conway, M.N. Pond, A. Watson, C. Etherington, H.L. Robey, M.H. Goldman.
Intravenous colistin sulphomethate in acute respiratory exacerbations in adult patients with cystic fibrosis.
Thorax., 52 (1997), pp. 987-993
[109]
A.R. Smyth, J. Bhatt.
Once-daily versus multiple-daily dosing with intravenous aminoglycosides for cystic fibrosis.
Cochrane Database Syst Rev., 2 (2014), pp. CD002009
[110]
A. Plummer, M. Wildman.
Duration of intravenous antibiotic therapy in people with cystic fibrosis.
Cochrane Database Syst Rev., (2013), pp. CD006682
[111]
J.M. Collaco, D.M. Green, G.R. Cutting, K.M. Naughton, P.J. Mogayzel Jr..
Location and duration of treatment of cystic fibrosis respiratory exacerbations do not affect outcomes.
Am J Respir Crit Care Med., 182 (2010), pp. 1137-1143
[112]
A. Balaguer, J. González de Dios.
Home versus hospital intravenous antibiotic therapy for cystic fibrosis.
Cochrane Database Syst Rev., (2012), pp. CD001917
[113]
J.F. Chmiel, M.W. Konstan.
Inflammation and anti-inflammatory therapies for cystic fibrosis.
Clin Chest Med., 28 (2007), pp. 331
[114]
T. Pressler.
Targeting airway inflammation in cystic fibrosis in children: Past, present, and future.
Paediatr Drugs., 13 (2011), pp. 141-147
[115]
L. Saiman, B.C. Marshall, N. Mayer-Hamblett, J.L. Burns, A.L. Quittner, D.A. Cibene, et al.
Azithromycin in patients with cystic fibrosis chronically infected with Pseudomonas aeruginosa: a randomized controlled trial.
JAMA., 290 (2003), pp. 1749-1756
[116]
J. Altenburg, C.S. de Graaff, T.S. van der Werf, W.G. Boersma.
Immunomodulatory effects of macrolide antibiotics — part 1: Biological mechanisms.
Respiration., 81 (2011), pp. 67-74
[117]
E.B. Wilms, D.J. Touw, H.G. Heijerman, C.K. van der Ent.
Azithromycin maintenance therapy in patients with cystic fibrosis: A dose advice based on a review of pharmacokinetics, efficacy, and side effects.
Pediatr Pulmonol., 47 (2012), pp. 658-665
[118]
Royal Brompton Hospital. Clinical Guidelines: Care of Children with Cystic Fibrosis. 6th edition 2014 [consultado 3 Ene 2015]. Disponible en: http://www.rbht.nhs.uk/healthprofessionals/clinical-departments/paediatrics/childrencf/
[119]
M.W. Konstan, P.J. Byard, C.L. Hoppel, P.B. Davis.
Effect of high-dose ibuprofen in patients with cystic fibrosis.
N Engl J Med., 323 (1995), pp. 848-854
[120]
L.C. Lands, R. Milner, A.M. Cantin, D. Manson, M. Corey.
High-dose ibuprofen in cystic fibrosis: Canadian safety and effectiveness trial.
J Pediatr., 151 (2007), pp. 249-254
[121]
M.W. Konstan, M.D. Schluchter, W. Xue, P.B. Davis.
Clinical use of ibuprofen is associated with slower FEV1 decline in children with cystic fibrosis.
Am J Respir Crit Care Med., 176 (2007), pp. 1084-1089
[122]
M.W. Konstan.
Ibuprofen therapy for cystic fibrosis lung disease: Revisited.
Curr Opin Pulm Med., 14 (2008), pp. 567
[123]
K. Cheng, D. Ashby, R.L. Smyth.
Oral steroids for long-term use in cystic fibrosis.
Cochrane Database Syst Rev., 10 (2011), pp. CD000407
[124]
E. Kieninger, N. Regamey.
Targeting inflammation in cystic fibrosis.
Respiration, 79 (2010), pp. 189-190
[125]
I.M. Balfour-Lynn, K. Welch.
Inhaled corticosteroids for cystic fibrosis.
Cochrane Database Syst Rev., 11 (2012), pp. CD001915
[126]
C. Rebeyrol, V. Saint-Criq, L. Guillot, L. Riffault, H. Corvol, K. Chadelat, et al.
Glucocorticoids reduce inflammation in cystic fibrosis bronchial epithelial cells.
Cell Signal., 24 (2012), pp. 1093-1099
[127]
K. De Boeck, F. Vermeulen, S. Wanyama, M. Thomas, Members of the Belgian CF Registry.
Inhaled corticosteroids and lower lung function decline in young children with CF.
Eur Respir J., 37 (2011), pp. 1091-1095
[128]
C.L. Ren, D.J. Pasta, L. Rasouliyan, J.S. Wagener, M.W. Konstan, W.J. Morgan, et al.
Relationship between inhaled corticosteroid therapy and rate of lung function decline in children with CF.
J Pediatr., 153 (2008), pp. 746-751
[129]
UK Cystic Fibrosis Trust. Infection Control Group Pseudomonas aeruginosa infection in people with cystic fibrosis. Suggestions for prevention and infection control. 2nd edition, 2004 [consultado 3 Ene 2015]. Disponible en: http://www.cysticfibrosis.org.uk/media/82064/pseudomonas-aeruginosa-infection-nov-04.pdf
[130]
C.A. O’Malley.
Infection control in cystic fibrosis: Cohorting, cross-contamination, and the respiratory therapist.
Respir Care., 54 (2009), pp. 641-657
[131]
L. Saiman, J.D. Siegel, J.J. LiPuma, R.F. Brown, E.A. Bryson, M.J. Chambers, et al.
Infection prevention and control guideline for cystic fibrosis: 2013 update.
Infect Control Hosp Epidemiol., 35 (2014), pp. S1-S67
[132]
J. Zhou, E. Garber, L. Saiman.
Survey of infection control policies for patients with cystic fibrosis in the United States.
Am J Infect Control., 36 (2008), pp. 220-222
[133]
J.D. Siegel, E. Rhinehart, M. Jackson, L. Chiarello, Health Care Infection Control Practices Advisory Committee.
Guideline for isolation precautions: Preventing transmission of infectious agents in health care settings.
Am J Infect Control., 35 (2007), pp. S65-S164
[134]
J.B. Zuckerman, D.E. Zuaro, B.S. Prato, K.L. Ruoff, R.W. Sawicki, H.B. Quinton, et al.
Bacterial contamination of cystic fibrosis clinics.
J Cyst Fibros., 8 (2009), pp. 186-192
[135]
A.L. Casey, D. Adams, T.J. Karpanen, P.A. Lambert, B.D. Cookson, P. Nightingale, et al.
Role of copper in reducing hospital environment contamination.
J Hosp Infect., 74 (2010), pp. 72-77
[136]
A. Mikolay, S. Huggett, L. Tikana, G. Grass, J. Braun, D.H. Nies.
Survival of bacteria on metallic copper surfaces in a hospital trial.
Appl Microbiol Biotechnol., 87 (2010), pp. 1875-1879
[137]
S.S. Sansgiry, V.N. Joish, S. Boklage, R.K. Goyal, P. Chopra, S. Sethi.
Economic burden of Pseudomonas aeruginosa infection in patients with cystic fibrosis.
J Med Econom., 15 (2012), pp. 219-224
[138]
J. Schreyögg, H. Hollmeyer, M. Bluemel, D. Staab, R. Busse.
Hospitalisation costs of cystic fibrosis.
Pharmacoeconomics., 24 (2006), pp. 999-1009
[139]
G. Braccini, F. Festini, V. Boni, A.S. Neri, V. Galici, S. Campana, et al.
The costs of treatment of early and chronic Pseudomonas aeruginosa infection in cystic fibrosis patients.
J Chemother., 21 (2009), pp. 188-192
[140]
M. Heimeshoff, H. Hollmeyer, J. Schreyo, O. Tiemann, D. Staab.
Cost of illness of cystic fibrosis in Germany. Results from a Large Cystic Fibrosis Centre.
Pharmacoeconomics., 30 (2012), pp. 763-777
[141]
E.M. DeWitt, C.A. Grussemeyer, J.Y. Friedman, M.A. Dinan, L. Lin, K.A. Schulman, et al.
Resource use, costs and utility estimates for patients with cystic fibrosis with mild impairment in lung function: Analysis of data collected alongside a 48-week multicenter clinical trial.
Value Health., 15 (2012), pp. 277-283
[142]
López Bastida J, Linertová R, Serrano Aguilar P, Hens Pérez M, Posada de la Paz M, Oliva Moreno J. Los costes socioeconómicos y la calidad de vida relacionada con la salud en pacientes con enfermedades raras en España. Proyecto del IMSERSO N.° 167/10, Marzo 2012 [consultado 3 Ene 2015]. Disponible en: http://www.fqmadrid.org/Noticias/costes_socioeconomicos/Costes_socioeconomicos_ER_2012.pdf
[143]
B.W. Ramsey, J. Davies, N.G. McElvaney, E. Tullis, S.C. Bell, P. Dřevínek, et al.
A CFTR potentiator in patients with cystic fibrosis and the G551D mutation.
N Engl J Med., 365 (2011), pp. 1663-1672

Grupo Español de Consenso del Tratamiento Antimicrobiano en el Paciente con Fibrosis Quística de las Sociedades Españolas de Fibrosis Quística (SEFQ), Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica (SEIMC), Neumología Pediátrica (SENP), Neumología y Cirugía Torácica (SEPAR), Quimioterapia (SEQ) y Farmacia Hospitalaria (SEFH).

Copyright © 2014. SEPAR
Archivos de Bronconeumología
Article options
Tools

Are you a health professional able to prescribe or dispense drugs?